服务介绍

双荧光素酶报告系统(Dual-Luciferase Reporter Assay System)是一种用于定量检测基因转录活性的高效实验技术。该系统在同一细胞中同时表达两种荧光素酶:萤火虫荧光素酶(Firefly Luciferase)作为报告基因,其表达水平受目标调控序列(启动子、3'UTR等)控制,直接反映该序列的转录活性;海肾荧光素酶(Renilla Luciferase)由组成型启动子驱动,作为内参基因,用于校正转染效率、细胞数量和裂解效率等系统误差。

检测时,先加入荧光素(Luciferin)底物检测 Firefly 的黄绿色荧光(峰值约560nm),再加入含腔肠素(Coelenterazine)的终止液,同时淬灭 Firefly 荧光并激活 Renilla 的蓝白色荧光(峰值约480nm)。**终以 Firefly/Renilla 相对比值表示目标调控序列的转录活性,有效消除实验操作差异,结果准确可靠。

双荧光素酶报告系统实验原理与流程图
图:双荧光素酶报告系统实验原理与操作流程

服务优势

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质粒构建能力强

可完成启动子克隆、3'UTR克隆、定点突变、截短体构建等各类报告质粒,测序验证确保序列准确。

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内参校正严谨

严格采用Firefly/Renilla双荧光比值定量,有效消除转染效率、细胞数等系统误差,结果准确。

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对照设置完整

每例实验均设置空白对照、阴性对照、阳性对照及复孔,复孔CV值小于15%,确保结果可靠。

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交付内容完整

提供原始荧光数据、归一化分析结果、统计学分析及详细实验报告,可直接用于论文发表。

服务流程

1
接收订单及样品
确认实验方案
接收质粒/细胞样品
2
质粒构建与验证
报告质粒构建
测序验证序列
3
细胞接种与共转染
报告质粒+内参质粒
共转染目标细胞
4
细胞培养与裂解
培养24-48h
被动裂解液裂解
5
双荧光检测
Firefly荧光检测
Renilla荧光检测
6
结果交付
数据归一化分析
实验报告交付

客户提供

样品与材料要求

  • 质粒样品:如需客户提供报告质粒,需提供经测序验证的正确质粒,浓度≥100ng/μL,总量≥10μg,干冰或冰袋运输。也可委托我司进行质粒构建。

  • 细胞样品:

    ▶ 需提供目标细胞系,细胞状态良好,无污染;
    ▶ 如为难转染细胞(原代细胞、悬浮细胞等),请提前说明,以便优化转染条件;
    ▶ 细胞运输:活细胞培养瓶常温运输,或冻存细胞干冰运输。
  • 处理因素:如涉及药物处理、基因过表达/敲低等,需提供药物或相关质粒/病毒,并说明处理浓度和时间。

  • 实验信息:需提供目标基因名称、ID号、序列信息(如已知)、实验目的(启动子分析/miRNA验证/通路研究)及预期分组。

服务说明

服务名称服务内容交付内容及标准服务周期(工作日)
启动子活性分析报告质粒构建启动子序列克隆至Firefly报告载体,测序验证10-15
内参质粒共转染报告质粒+Renilla内参质粒共转染,设3复孔
双荧光素酶检测Firefly及Renilla荧光检测,原始数据
数据分析Firefly/Renilla比值计算、归一化分析、统计图表
miRNA靶基因验证3'UTR报告质粒构建靶基因3'UTR野生型及结合位点突变型质粒构建,测序验证12-18
miRNA共转染报告质粒+miRNA mimic/inhibitor+内参质粒共转染,设3复孔
双荧光素酶检测Firefly及Renilla荧光检测,原始数据
野生型/突变型对照同时检测野生型及突变型报告质粒,验证结合特异性
数据分析相对荧光比值计算、统计学分析、结果图表
信号通路研究通路报告质粒提供NF-κB、Wnt/TCF、AP-1、SBE等常用通路报告质粒8-12
药物/基因处理按实验方案进行药物处理或基因过表达/敲低
双荧光素酶检测Firefly及Renilla荧光检测,原始数据
数据分析通路活性相对比值计算、剂量/时间曲线、统计图表

案例展示

miRNA-21 通过靶向 PTEN 3'UTR 调控肿瘤细胞增殖
期刊:Oncogene IF:8.756 发表时间:2023
研究通过双荧光素酶报告系统验证了miRNA-21与PTEN基因3'UTR的直接结合关系。将PTEN 3'UTR野生型及miRNA结合位点突变型分别克隆至Firefly报告基因下游,与miRNA-21 mimic共转染后检测荧光活性。结果显示,miRNA-21过表达显著抑制野生型报告质粒的荧光活性(P<0.01),而对突变型报告质粒无显著影响,证明PTEN是miRNA-21的直接靶基因。
天然产物X通过抑制NF-κB通路发挥抗炎作用
期刊:Phytomedicine IF:6.656 发表时间:2022
利用含NF-κB响应元件的双荧光素酶报告质粒,检测天然产物X对LPS诱导的NF-κB通路活化的影响。结果表明,天然产物X可剂量依赖性地抑制LPS诱导的NF-κB报告基因活性(IC50≈3.2μM),同时不影响细胞活力。结合Western Blot验证p65核转位结果,证实该化合物通过抑制NF-κB信号通路发挥抗炎活性。

Q&A 常见问题

双荧光素酶报告系统与单荧光素酶相比有什么优势?
双荧光素酶系统引入了Renilla内参基因,可有效校正细胞转染效率、细胞数量、裂解效率等实验操作差异,使结果更加准确可靠。单荧光素酶系统缺乏内参校正,重复性和准确性相对较差。
启动子分析需要克隆多长的启动子序列?
一般建议克隆转录起始位点上游2000bp左右的序列作为启动子区域。如已知核心启动子区域,可根据需要克隆特定长度。建议同时构建截短体或定点突变体,以定位核心调控区域。
miRNA靶基因验证为什么必须做突变型对照?
仅做野生型报告质粒无法排除miRNA通过间接途径(如调控其他因子)影响报告基因活性的可能。构建miRNA结合位点突变型报告质粒,若miRNA对突变型无显著影响,而对野生型有显著抑制,则可证明是直接靶向结合。
哪些细胞系适合做双荧光素酶实验?
大多数易转染的贴壁细胞系(如HEK293、Hela、HepG2等)均适合。难转染细胞(原代细胞、悬浮细胞、免疫细胞等)需优化转染条件(如使用病毒转导),请提前与技术人员沟通。
实验需要设置几个复孔?数据如何统计?
每组建议设置3个复孔,复孔间CV值应小于15%。数据以Firefly/Renilla相对比值表示,以对照组为基准进行归一化,采用t检验或单因素方差分析进行统计学比较,P<0.05为差异显著。

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